Пособие для врачей.
|
Таблица 1 |
||
Сравнительная оценка показателей
иммунного статуса в группах здоровых доноров и онкологических больных |
||
Показатель
|
Доноры М ± SE (LQ — UQ) |
Больные (n=56) |
Абс. лимфоцитоз (х 109/L) | 1,85 ± 0,09 (1,44 — 2,05) | 1,31 ± 0,07 ** |
CD3 Т-лимфоциты (%) | 66,8 ± 1,0 (62,0 — 71,5) | 61,9 ± 1,5 * |
CD3 Т-лимфоциты (x 109/L) | 1,15 ± 0,07 (0,94 — 1,27) | 0,75 ± 0,07 ** |
CD4 Т-лимфоциты (%) | 38,8 ± 1,3 (32,5 — 44,5) | 37,3 ± 1,0 |
CD8 Т-лимфоциты (%) | 26,0 ± 1,0 (22,0 — 30,0) | 25,2 ± 1,2 |
CD4/CD8 | 1,63 ± 0,09 (1,2 — 2,0) | 1,7 ± 0,1 |
CD20 B-клетки (%) | 11,0 ± 0,9 (7,0 — 16,0) | 12,0 ± 1,0 |
CD16 NK-клетки (%) | 11,2 ± 1,3 (6,2 — 19,1) | 15,8 ± 1,0 * |
HLA-DR моноциты (%) | 72,0 ± 4,0 (56,0 — 90,0) | 69,0 ± 2,8 |
Апоптоз лимфоцитов (%) | 4,1 ± 0,6 (2 — 10)min-max | 6,8± 0,6 * |
Апоптоз нейтрофилов (%) | 7,5 ± 1,0 (3 — 18) min-max | 5,2± 0,8 |
Пролиферация (имп/мин) | ||
Спонтанная | 1630 ± 215 (950 — 2980) |
1310 ± 104 |
КонА-индуцированная | 59240 ± 3990 (24000 — 71640) | 17260 ± 1540 ** |
ИВКонА | 36 ± 3,2 (13,5 — 44,1) | 17,2 ± 1,5 ** |
Анти-CD3-индуцированная | 34730 ± 1950 (20000 — 44700) | 12810 ± 1500 ** |
ИВСD3-мАТ | 31 ± 2,6 (15 — 47) | 11,6 ± 1,5 ** |
ИСА (расч.ед.) | 0,95± 0,04 (0,8 — 1,05) | 0,84 ± 0,04 ** |
ИВА (расч.ед.) | 1,57± 0,09 (1,04 — 2,0) | 1,08 ± 0,04 ** |
Примечания: данные представлены в виде M ± SE — средняя ± стандартная ошибка. LQ — UQ — нижнее и верхнее квартильное (25%) отклонение. * — pU < 0,05 ** — pU < 0,01, достоверность различий между группами.
Из данных таблицы 1 видно, что в целом по группе обследованных
больных было выявлено достоверное снижение абсолютного количества лимфоцитов,
относительного и абсолютного содержания CD3+Т-лимфоцитов, а также угнетение
пролиферативного ответа Т-клеток как при стимуляции моноклональными анти-CD3-антителами
по классическому пути активации (через CD3-Т-клеточный рецепторный комплекс),
так и при стимуляции митогеном конканавалином А по альтернативному пути
активации (через адгезивные молекулы). Дополнительно регистрировалось
усиление апоптоза циркулирующих лимфоцитов крови, а также увеличение доли
CD16+NK-клеток, которое имело, вероятно, компенсаторный характер, обусловленный
активным опухолевым процессом.
Необходимо отметить, что у 33 из 56 обследованных больных (т.е. в 59%
случаев) нарушения в Т-клеточном звене иммунитета имели комбинированный
характер, т.е. проявлялись как в отношении количества, так и функциональной
активности Т-лимфоцитов. При этом у больных регистрировалась выраженная
абсолютная Т-лимфопения (содержание CD3+Т-лимфоцитов <0,94 х 109/л)
в сочетании с глубоким угнетением КонА-индуцированного пролиферативного
ответа Т-клеток (<24000 имп/мин).
В целом по группе больных уровень пролиферации Т-клеток в анти-CD3-стимулированных
культурах был снижен более чем в 2 раза (12810 ±
1500 vs 34730 ± 1950 имп/мин у доноров).
При этом снижение пролиферативного ответа на 50% и более по сравнению
со средним нормативным уровнем (т.е.<17000 имп/мин), выявлялось в 71,5%
случаев (у 40 из 56 обследованных больных). Таким образом, у значительной
части онкологических больных функциональная реактивность Т-клеток в ответ
на стимуляцию через CD3-Т-клеточный рецепторный комплекс была резко угнетена
(5950 ± 670 имп/мин, n=40), что свидетельствует
о пребывании их в состоянии анергии.
По сравнению с донорами сыворотки больных отличались достоверным усилением
супрессорной активности, что очевидно было обусловлено смещением баланса
регуляторных факторов в сторону медиаторов с иммуносупрессорными свойствами
[18]. О доминировании супрессорных/противовоспалительных медиаторов дополнительно
свидетельствует значимо низкий уровень воспалительной активности сыворотки
(ИВА 1,08 ± 0,04 vs 1,57
± 0,09 расч.ед. у доноров). Следует отметить, что у 23/56
больных (в 41% случаев) суммарный биологический эффект сывороточных факторов
непосредственно проявлялся в виде противовоспалительной активности, при
этом сыворотки больных в среднем на 20% ингибировали продукцию реактивных
радикалов кислорода лейкоцитами здоровых доноров (ИВА 0,79
± 0,02 расч.ед., n=23).
Выявление у онкологических больных доминирующей супрессорной активности
в сыворотке крови в сочетании с анергией Т-клеток представляет особый
интерес, поскольку согласно появившимся в последние годы данным анергичные
CD4+Т-лимфоциты или, так называемые Tr1 клетки, могут проявлять регуляторную/супрессорную
активность посредством продукции ИЛ-10 [19]. Учитывая неспецифический
характер супрессорной активности анергичных Т-клеток можно было предположить,
что больные со сниженным aнти-CD3 ответом будут характеризоваться перекрестным
снижением ответа и на другие стимулы. Действительно, сравнительный анализ
пролиферативного ответа на КонА в группах больных со сниженным (<17000
имп/мин; 5950 ± 670, n=40) и относительно
сохранным (>17000 имп/мин; 28060 ± 1500,
n=16) анти-CD3-стимулированным ответом показал, что у пациентов с анергией
Т-клеток уровень КонА-индуцированной пролиферации был значимо ниже (12620
± 1470 vs 27580 ±
2370 имп/мин; pU<0,001). Причем, между уровнем анти-CD3-индуцированной
пролиферации и ответом на КонА выявлялась достоверная прямая корреляционная
взаимосвязь (r = 0,55; p<0,0001, n=56).
Поскольку пролиферативная активность анергичных Т-клеток может быть частично
или полностью восстановлена экзогенным ИЛ-2, был дополнительно исследован
эффект рИЛ-2 (Ронколейкина®) на уровень пролиферации Т-клеток
больных в анти-CD3-стимулированных культурах (табл. 2). В целом по группе
обследованных больных регистрировалось достоверное усиление анти-CD3 ответа
в присутствии ИЛ-2 в дозе 100 ЕД/мл (ИВИЛ-2 3,2 ±
0,6). Однако корригирующий эффект рИЛ-2 проявлялся в основном за счет
больных с анергией Т-клеток, у которых пролиферативный ответ на анти-CD3
с 5950 ± 670 имп/мин увеличивался в присутствии
рИЛ-2 до 15230 ± 1530 имп/мин (ИВИЛ-2 4,1
± 0,8). В то же время в подгруппе пациентов
с относительно сохранной функциональной реактивностью Т-клеток значимого
прироста в уровне пролиферации не наблюдалось (ИВИЛ-2 1,07 ±
0,08).
Таблица 2 |
|||
Корригирующий эффект рИЛ-2 (Ронколейкина®)
на функциональную реактивность Т-клеток онкологических больных
в культуре in vitro |
|||
Группы
больных |
Анти-CD3 |
Анти-CD3
+ рИЛ-2 |
ИВИЛ-2 |
В целом по группе n=56 |
12810 ± 1500 | 19120 ± 1420 ** | 3,2 ± 0,6 |
Анергии Т-клеток НЕТ n=16 |
28060 ± 1500 | 28270 ± 1660 | 1,07 ± 0,08 |
Анергия Т-клеток ЕСТЬ n=40 |
5950 ± 670 | 15230 ± 1530 ** | 4,1 ± 0,8 |
Примечания: ** — pt < 0,01, достоверность
различий показателей анти-CD3 стимулированного пролиферативного ответа
в отсутствии и в присутствии рИЛ-2.
Таким образом, в раннем послеоперационном периоде у онкологических больных
вне зависимости от нозологической формы рака обнаруживаются однонаправленные
иммунные дисфункции, которые в большей степени затрагивают Т-клеточное
звено иммунитета и проявляются в виде абсолютной лимфопении, снижения
количества CD3+Т-лимфоцитов, а также угнетения их пролиферативной активности.
Механизмами развития этих дисфункций являются индукция анергии и усиление
апоптоза Т-лимфоцитов, которые развиваются на фоне сдвига баланса регуляторных
факторов в сторону доминирования медиаторов с иммуносупрессорной и противовоспалительной
активностью. Результаты иммунологического обследования свидетельствуют
о целесообразности включения в комплекс лечебно-профилактических мероприятий,
проводимый у оперированных онкологических больных, иммунотропных препаратов
с целью своевременной коррекции существующих иммунных нарушений, предупреждения
дальнейшего их углубления и профилактики возможного развития послеоперационных
инфекционных осложнений. Учитывая преимущественное поражение Т-клеточного
звена, выраженный сдвиг цитокинового баланса в строну иммуносупрессорных/противовоспалительных
медиаторов, а также доказанный корригирующий эффект рИЛ-2 в отношении
функциональной активности Т-клеток in vitro патогенетически обоснованным
подходом в этом случае представляется использование экзогенного рИЛ-2
человека в форме отечественного фармакопейного препарата Ронколейкина®.
Иммунокорригирующая и клиническая эффективность иммунопрофилактики По
разработанному протоколу было пролечено 55 больных в основной группе и
54 пациента в группе-плацебо. Сформированные на основании критериев включения/исключения
группы были сопоставимы по полу и возрасту больных, а также основным нозологическим
формам и стадии рака (табл. 3).
Таблица 3 |
||
Распределение больных в группах
по полу, возрасту больных и нозологическим формам рака |
||
Плацебо,
n=54 |
Ронколейкин®, n=55 |
|
Мужчины/женщины | 48% / 52% (26/28) | 47% / 53% (26/29) |
Средний возраст (min — max) | 58 ± 1,5 (19 — 80) | 60,2 ± 1,0 (42 — 77) |
Рак желудка | 61% (33/54) | 47% (26/55) |
Колоректальный рак | 39% (21/54) | 53% (29/55) |
Рак толстой кишки | 38% (8/21) | 52% (15/29) |
Рак прямой кишки | 62% (13/21) | 48% (14/29) |
Сравнительная оценка исходного состояния иммунитета, которая проводилась у больных из оппозитных подгрупп в раннем послеоперационном периоде до начала иммунопрофилактики, не выявила достоверных различий по анализируемым параметрам. Сформированные группы были сопоставимы по выраженности иммунных дисфункций (табл. 4).
Таблица 4 |
|||
Сравнительная оценка показателей
иммунного статуса в подгруппах больных до начала иммунопрофилактики
|
|||
Показатель |
Доноры М ± SE |
Больные
(n=56) |
|
Плацебо
(n=28) |
Ронко
(n=28) |
||
Лейкоцитоз (х 109/L) | 6,3 ±0,6 | 8,1 ±0,6 | 7,7 ±0,4 |
СОЭ (мм/час) | 1 -10 ** | 27 ± 2 | 26,5 ± 2,2 ** |
ЛИИ (усл.ед.) | 1,2 ± 0,4 | 5,1 ± 0,6 ** | 5,4 ± 0,4 ** |
Абс. лимфоцитоз (х 109/L) | 1,85 ± 0,09 | 1,42 ± 0,11 ** | 1,2 ± 0,08 ** |
CD3 Т-лимфоциты (%) | 66,8 ± 1,0 | 60,3 ± 2,0 * | 63,0 ± 2,0 * |
CD4 Т-лимфоциты (%) | 38,8 ± 1,3 | 36,8 ± 1,4 | 37,9 ± 1,6 |
CD8 Т-лимфоциты (%) | 26,0 ± 1,0 | 23,7 ± 1,5 | 26,5 ± 1,9 |
CD4/CD8 | 1,63 ± 0,09 | 1,7 ± 0,1 | 1,6 ± 0,1 |
CD20 B-клетки (%) | 11,0 ± 0,9 | 13,0 ± 1,7 | 11,3 ± 1,2 |
CD16 NK-клетки (%) | 11,2 ± 1,3 | 16,3 ± 1,5 * | 15,4 ± 1,3 * |
HLA-DR моноциты (%) | 72,0 ± 4,0 | 68,9 ± 3,5 | 69,0 ± 4,7 |
Апоптоз лимфоцитов (%) | 4,1 ± 0,6 | 6,5 ± 0,7 * | 7,4 ± 1,0 * |
Апоптоз моноцитов (%) | 14,5 ± 1,7 | 16,2 ± 1,9 | 16,8 ± 1,6 |
Апоптоз нейтрофилов (%) | 7,5 ± 1,0 | 4,2 ± 1,1 | 6,0 ± 1,2 |
Пролиферация (имп/мин) Спонтанная |
1630 ± 215 | 1230 ± 120 | 1380 ± 170 |
КонА-индуцированная | 59240 ± 3990 | 17100 ± 2480 ** | 17410 ± 1920 ** |
ИВКонА | 36 ± 3,2 | 14,9 ± 2,0 ** | 18,5 ± 3,3 ** |
Анти-CD3-индуцированная | 34730 ± 1950 | 13680 ± 2100 ** | 12000 ± 2170 ** |
ИВСD3-мАТ | 31 ± 2,6 | 12,0 ± 1,8 ** | 11,0 ± 2,5 ** |
ИСА (расч.ед.) | 0,95 ± 0,04 | 0,93 ± 0,06 | 0,78 ± 0,04 ** |
ИВА (расч.ед.) | 1,57 ± 0,09 | 1,15 ± 0,06 ** | 1,02 ± 0,05 ** |
Примечания: * — pU< 0,05 ** — pU< 0,01, достоверность
различий по сравнению с донорами.
Тем не менее, в основной клинической группе отмечалась тенденция к более
выраженному изменению баланса сывороточных регуляторных факторов, что
проявлялось более низкими средними значениями соответствующих индексов
(ИСА 0,78 ± 0,04 vs 0,93 + 0,06 в группе
"Плацебо", рU=0,11 и ИВА 1,02 ± 0,05 vs 1,15 ±
0,06 в группе "Плацебо", pU=0,08). Частота развития
анергии Т-клеток также была несколько выше в основной клинической группе
и составляла 78,5% (22/28), тогда как в группе "Плацебо" была
выявлена у 18 из 28 больных (в 64,3% случаев, рТМФ=0,18).
Ранее было показано, что высокая активность симпатического отдела вегетативной
нервной системы (ВНС) сопряжена с более частым развитием послеоперационных
инфекционных осложнений и худшим отдаленным прогнозом у больных раком
желудка. Так, многолетние исследования, выполненные в группе 270 больных,
которым были радикально оперированы по поводу рака желудка, показали,
что у 154 больных с высоким уровнем симпатотонии (ИН >100 расч.ед.)
послеоперационные гнойно-септические осложнения развились в 20,1% случаев
(31/154). В тоже время в подгруппе больных с низким уровнем активности
симпатического отдела ВНС (ИН <100 расч.ед.) частота развития послеоперационных
инфекционных осложнений была достоверно ниже и составляла только 7,8%
(9/116, РX2=0,004). При этом по другим показателям,
таким как пол и возраст пациентов, стадийность опухолевого процесса, объем
оперативного вмешательства, сравниваемые подгруппы больных были сопоставимы
между собой.
Известно, что стимуляция -адренергических рецепторов иммунокомпетентных
клеток симпатическими нейромедиаторами (норадреналин, адреналин) приводит
к подавлению продукции Th1/провоспалительных цитокинов, усилению продукции
иммуносупрессорных и противовоспалительных цитокинов (ИЛ-10, ТРФ-b
и активации клеточной гибели через механизм апоптоза. Под влиянием факторов
оперативного стресса происходит активация симпатического отдела ВНС, что
приводит к увеличению уровня симпатических медиаторов, участвующих в формировании
послеоперационной иммуносупрессии. Поэтому не случайно у обследованных
нами больных мы обнаруживаем сдвиг баланса сывороточных факторов в сторону
доминирования медиаторов с иммуносупрессорной и противовоспалительной
активностью, функциональную ареактивность Т-клеток, повышенный апоптоз
лимфоцитов и абсолютную лимфопению.
Следует при этом отметить, что в основной клинической группе доля больных
с высоким уровнем симпатотонии (ИН >100 расч.ед.) была достоверно выше,
чем в группе "Плацебо", и составляла соответственно 69% (38/55)
и 42,6% (23/54, РX2=0,005). При этом относительное
количество таких больных было выше также в сравниваемых подгруппах, где
было выполнено иммунологическое обследование (19/28, 68% в группе "Ронколейкин®
и 9/28, 32% в группе "Плацебо", РX2=0,002).
Вероятно, этим можно объяснить обнаруженные тенденции в развитии более
выраженных иммунных дисфункций среди пациентов основной клинической группы,
у которых доминирование сывороточных факторов с иммуносупрессорной и противовоспалительной
активностью проявлялось в большей степени, чаще регистрировалась анергия
Т-клеток, несколько выше были значения апоптоза лимфоцитов в сочетании
с более выраженной абсолютной лимфопенией (см. табл. 4).
Таким образом, несмотря на клиническую однородность сформированных подгрупп,
результаты иммунологического обследования и анализа уровня активности
симпатического отдела ВНС показывают, что вероятность развития послеоперационных
инфекционных осложнений в основной клинической группе была выше по сравнению
с группой "Плацебо".
Одним из критериев при оценке эффективности проводимой иммунопрофилактики
являлась коррекция лабораторных проявлений эндотоксикоза и иммунодефицита.
Повторное обследование больных проводили через 72 ч после окончания последней
инфузии Ронколейкинаили препарата-плацебо (на 8 сутки послеоперационного
периода).
У 58% (32/55) больных из основной клинической группы регистрировалось
ослабление степени тяжести послеоперационного эндотоксикоза в виде нормализации
температуры тела и показателей гемодинамики, достоверного снижения лейкоцитоза,
СОЭ и лейкоцитарного индекса интоксикации, увеличения относительного и
абсолютного количества лимфоцитов. В группе "Плацебо" детоксикационный
эффект обнаруживался достоверно реже — только в 28% (15/54) случаев (РX2=0,001),
тогда как у остальных пациентов либо вообще не отмечалось какой-либо заметной
динамики (46%, 25/54), либо она была отрицательной (26%, 14/54).
Использование Ронколейкина® в раннем послеоперационном
периоде характеризовалось не только детоксикационным эффектом, но и выраженным
иммунокорригирующим действием. Из данных таблицы 5 видно, что у больных
из основной клинической группы очень быстро, т.е. уже через 3 дня после
завершения иммунопрофилактического курса, происходила коррекция измененных
показателей иммунитета. Отмечалась отчетливая тенденция нормализации субпопуляционного
состава Т-лимфоцитов. При этом достоверно усиливалась пролиферативная
активность Т-клеток в ответ на стимуляцию КонА и анти-CD3-мАТ. Отмечалась
стабилизация показателей биологической активности сыворотки крови, т.е.
прогрессии цитокинового дисбаланса не происходило (ИСА 0,78 и 0,80 расч.ед.,
и ИВА 1,02 и 1,06 расч.ед., соответственно до и после иммунопрофилактики).
Регистрировалось достоверное снижение количества апоптотических лимфоцитов
до уровня нормативных значений, что вероятно явилось одной из причин значимого
увеличения относительного и абсолютного их содержания в периферической
крови.
Иная картина наблюдалась в группе "Плацебо", в которой у больных,
несмотря на терапию, проводимую в послеоперационном периоде в рамках традиционных
и общепринятых схем, выявленные исходно иммунные дисфункции сохранялись
и при повторном обследовании.
Таблица 5 |
|||
Динамика показателей иммунного
статуса больных основной клинической группы |
|||
Показатель |
Доноры М ± SE |
Ронколейкин® |
|
До (n=28) |
После
(n=28) |
||
Лимфоциты (%) | 28 ± 1,3 | 16,6 ± 1,2 | 20,2 ± 1,0 ** |
Лимфоциты (х109/л) | 1,85 ± 0,09 | 1,2 ± 0,08 | 1,5 ± 0,08 * |
CD3 Т-лимфоциты (%) | 66,8 ±1,0 | 63,0 ± 2,0 | 66,0 ± 1,7 |
CD4 Т-лимфоциты (%) | 38,8 ± 1,3 | 37,9 ± 1,6 | 40,0 ± 2,0 |
CD8 Т-лимфоциты (%) | 26,0 ± 1,0 | 26,5 ± 1,9 | 25,0 ± 1,3 |
CD4/CD8 | 1,63 ± 0,09 | 1,6 ± 0,1 | 1,7 ± 0,1 |
CD20 B-клетки (%) |
11,0 ± 0,9 | 11,3 ± 1,2 | 11,0 ± 1,5 |
CD16 NK-клетки (%) | 11,2 ± 1,3 | 15,4 ± 1,3 | 15,0 ± 1,1 |
HLA-DR моноциты (%) | 72,0 ± 4,0 | 69,0 ± 4,7 | 70,0 ± 5,4 |
Апоптоз лимфоцитов (%) | 4,1 ± 0,6 | 7,4 ± 1,0 | 5,3 ± 0,4 * |
Апоптоз моноцитов (%) |
14,5 ± 1,7 | 16,8 ± 1,6 | 15,5 ± 2,3 |
Апоптоз нейтрофилов (%) | 7,5 ± 1,0 | 6,0 ± 1,2 | 7,2 ± 1,2 |
Пролиферация (имп/мин) Спонтанная |
1630 ± 215 |
1380 ± 170 | 1660 ± 140 |
КонА-индуцированная | 59240 ± 3990 | 17410 ± 1920 | 26460 ± 2800 * |
Анти-CD3-индуцированная | 34730 ± 1950 | 12000 ± 2170 | 22270 ±1900 ** |
ИСА (расч.ед.) | 0,95 ± 0,04 | 0,78 ± 0,04 | 0,80 ± 0,04 |
ИВА (расч.ед.) | 1,57 ± 0,09 | 1,02 ± 0,05 | 1,06 ± 0,07 |
Примечания:
* — pU < 0,05 ** — pU < 0,01, достоверность различий
показателей до и после проведения иммунопрофилактики Ронколейкином®.
Из данных таблиц 6 видно, что у больных оставалось низким относительное содержание CD3+Т-лимфоцитов на фоне сохраняющейся абсолютной лимфопении, не восстанавливалась пролиферативная активность Т-клеток в ответ на стимуляцию КонА или анти-CD3-антителами. Кроме того, дополнительно регистрировалось снижение относительного количества HLA-DR+моноцитов (с 69 до 60%), а также отмечалась прогрессия цитокинового дисбаланса, что проявлялось достоверным усилением супрессорной активности сывороточных факторов (с 0,93 до 0,70 расч.ед. P<0,01), однако воспалительная активность сыворотки значимо не менялась (ИВА 1,15 и 1,26 расч.ед.). Частотный анализ показал, что дальнейшее ухудшение иммунологических показателей (снижение абсолютного количества и функциональной активности Т-клеток) при повторном обследовании было выявлено у 10 из 28 больных группы "Плацебо" (в 36% случаев), тогда как в основной клинической группе доля таких больных составила только 7% (2/28, РX2 =0,009).
Таблица 6 |
|||
Показатели иммунного статуса больных
группы-плацебо |
|||
Показатели |
Доноры М ± SE |
Плацебо |
|
До (n=28) |
После (n=28) |
||
Лимфоциты (%) | 28 ± 1,3 | 19 ± 1,4 | 20 ± 1,0 |
Лимфоциты (х109/л) | 1,85 ±0,09 | 1,42 ±0,11 | 1,3 ± 0,09 |
CD3 Т-лимфоциты (%) | 66,8 ±1,0 | 60,3± 2,0 | 59,5 ±1,9 |
CD4 Т-лимфоциты (%) | 38,8 ±1,3 | 36,8 ±1,4 | 35,6 ±1,7 |
CD8 Т-лимфоциты (%) | 26,0 ±1,0 | 23,7 ±1,5 | 23,0 ±1,8 |
CD4/CD8 | 1,63 ±0,09 | 1,7 ±0,1 | 1,7 ±0,1 |
CD20 B-клетки (%) | 11,0 ± 0,9 | 13,0 ± 1,7 | 10,0 ± 1,2 |
CD16 NK-клетки (%) | 11,2 ± 1,3 | 16,3 ± 1,5 | 13,7 ± 1,6 |
HLA-DR моноциты (%) | 72,0 ± 4,0 | 68,9 ± 3,5 | 60,0 ± 2,0 * |
Апоптоз лимфоцитов (%) | 4,1 ± 0,6 | 6,5 ± 0,7 | 6,0 ± 0,8 |
Апоптоз моноцитов (%) | 14,5 ± 1,7 | 16,2 ± 1,9 | 16,3 ± 1,7 |
Апоптоз нейтрофилов (%) | 7,5 ± 1,0 | 4,2 ± 1,1 | 3,3 ± 0,5 |
Пролиферация (имп/мин) Спонтанная |
1630 ± 215 | 1230 ± 120 | 1610 ± 180 |
КонА-индуцированная | 59240 ± 3990 | 17100 ± 2480 | 14550 ± 2100 |
Анти-CD3-индуцированная | 34730 ± 1950 | 13680 ± 2100 | 16790 ± 1740 |
ИСА (расч.ед.) | 0,95 ± 0,04 | 0,93 ± 0,06 | 0,70 ± 0,04 ** |
ИВА (расч.ед.) | 1,57 ± 0,09 | 1,15 ± 0,06 | 1,26 ± 0,05 |
Таким образом, оценка параметров иммунитета у онкологических больных в послеоперационном
периоде в динамике проведения иммунопрофилактики Ронколейкином® в
сравнении с пациентами группы «Плацебо» свидетельствует о том, что используемый
препарат рИЛ-2 характеризуется отчетливым иммунокорригирующим эффектом не только
в культуре in vitro, но также и в условиях in vivo при его клиническом использовании.
В соответствии с разработанным Протоколом клинических испытаний основным критерием
при оценке эффективности иммунопрофилактики Ронколейкином® являлось
отсутствие постхирургической инфекции у онкологических больных на протяжении
всего периода госпитализации. Развитие различных инфекционных, гнойно-септических
осложнений в послеоперационном периоде было зафиксировано у 15 из 109 оперированных
больных, что составило 13,8%. В структуре осложнений преобладали внутрибрюшные
абсцессы (10/15, 66,7%). Кроме того, было отмечено развитие гнойного инфильтрата
мягких тканей (1/15, 6,7%), а также некроза раны или стенок полости раны (2/15,
13,3%). У двух больных течение послеоперационного периода осложнилось развитием
сепсиса (2/15, 13,3%), который у одного пациента с гастроэзофагеальным раком
II степени привел к летальному исходу. Таким образом, внутрибольничная летальность
в целом по группе составила 0,9% (1/109).
Анализ клинической эффективности проводимой иммунопрофилактики показал (табл.
7), что использование Ронколейкина® в раннем послеоперационном периоде
у онкологических больных с целью иммунокоррекции и иммунореабилитации позволяет
почти в 3 раза снизить частоту развития инфекционных осложнений с 20,4% до 7,3%
(11/54 в группе-плацебо и 4/55 в основной группе, РX2=0,04).
Таблица 7 |
|||
Клиническая эффективность
Ронколейкина® в иммунопрофилактике инфекционных
послеоперационных осложнений у онкологических больных |
|||
Частота
развития послеоперационных инфекционных осложнений |
|||
Плацебо,
n=54 |
Ронко,
n=55 |
РX2 |
|
В целом по группе | 20,4% (11/54) | 7,3% (4/55) | 0,04 |
Рак желудка | 18,2% (6/33) | 15,4% (4/26) | 0,77 |
Колоректальный рак | 23,8% (5/21) | 0% (0/29) | 0,005 |
Летальность | 1,8% (1/54) | 0% | 0,31 |
При этом наиболее ярко выявленные различия в клиническом эффекте проявлялись
в подгруппах больных с колоректальным раком. Так, среди этих пациентов
основной клинической группы не было выявлено ни одного случая с осложненным
течением послеоперационного периода, тогда как в группе "Плацебо" частота
инфекционных осложнений составила 23,8% (5/21, РX2=0,005).
Дополнительный анализ эффективности проводимой цитокинопрофилактики в
подгруппах больных с низким (ИН <100 расч.ед.) и высоким (ИН >100
рач.ед.) уровнем симпатотонии показал, что иммунопрофилактика с использованием
Ронколейкина® была эффективна также у больных высоким уровнем
активности симпатического отдела ВНС, которые относятся к группе повышенного
риска развития послеоперационных осложнений. У данной категории больных
по сравнению с группой "Плацебо" использование Ронколейкина®
приводило к снижению частота развития инфекционных осложнений с 39,0 до
5,3% (РX2 =0,0009), в том числе при колоректальном
раке с 44,4 до 0% (РX2 =0,0004), а при раке желудка
с 36,0 до 15,4% (РX2 =0,23).
ЗАКЛЮЧЕНИЕ
Ронколейкин® является иммунотропным, цитокин-содержащим
препаратом нового поколения. Применение Ронколейкина® в
виде двух в/в инфузий по 0,5 млн МЕ в раннем послеоперационном периоде
характеризуется детоксикационным и иммунокорригирующим действием и позволяет
в 3 раза сократить частоту постхирургических инфекций у радикально оперированных
онкологических больных. Можно полагать, что если бы проводимые нами исследования
не были регламентированы "жесткими" требованиями протокола клинических
испытаний, то потенциальный эффект иммунопрофилактики мог бы быть еще
более значимым, поскольку представляется оправданным дополнительное однократное
введение Ронколейкина® в дооперационном периоде. Целесообразность
"упреждающей" тактики была продемонстрирована при использовании
импортного аналога Пролейкина® [11, 12], и такая схема
может оказаться полезной при последующем внедрении предложенного нами
подхода в клиническую практику.
Клинические эффекты Ронколейкина® связаны с его способностью
стимулировать противоинфекционный иммунитет. Доказано, что ИЛ-2 протектирует
развитие апоптоза лимфоцитов и нейтрофилов, предотвращает развитие функциональной
анергии Т-клеток, усиливает продукцию антител активированными В-лимфоцитами,
нормализует нарушенный баланс про- и противовоспалительных цитокинов,
опосредованно через стимуляцию продукции ИФН-Б натуральными киллерами
и T-хелперами 1-го типа, восстанавливает функциональную активность клеток
моноцитарно/макрофагального ряда и цитотоксическую активность Т-лимфоцитов
и NK-клеток. В конечном итоге, Ронколейкин® повышает эффективность
работы механизмов и неспецифической резистентности (врожденного иммунитета)
и антиген-специфического иммунного ответа (приобретенного иммунитета).
Применение Ронколейкина®, как и других цитокин-содержащих
препаратов, должно проводиться под наблюдением врача. Нами не было зарегистрировано
каких-либо серьезных побочных реакций при использовании Ронколейкина®
по предложенной схеме. Опыт клинического применения Ронколейкина свидетельствует
о его хорошей переносимости и отсутствии токсичности. В отдельных случаях
после проведения терапии Ронколейкином® у больных может
отмечаться развитие, так называемых, "цитокиновых реакций" в
виде кратковременного озноба, подъема температуры тела до 38,5-390С, умеренного
акроцианоза. Развитие таких реакций свидетельствует о восстановлении реактивности
больного, и, как правило, не требует медикаментозной коррекции.
Таким образом, Ронколейкин® является высокоэффективным
иммунотропным лекарственным препаратом, удобным в применении, не дающим
побочных/токсических реакций, что позволяет использовать его не только
в онкологии, но и в других областях хирургии с целью профилактики инфекционных
послеоперационных осложнений, особенно, в случаях высокого риска их развития
(у "иммунокомпрометированных" больных, при выполнении контаминированных
или инфицированных, а также объемных и продолжительных оперативных вмешательств,
и т.д.).
СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ
1. Гостищев В.К. Пути и возможности профилактики инфекционных осложнений в хирургии. В кн.: Рациональные подходы к профилактике инфекционных осложнений в хирургии. Методические рекомендации. Москва, из-во: "Универсум Паблишинг". 1997. С. 2-11.2. Harries S.A., Menzies D. Antimicrobial prophylaxis in general surgery. In: Management of bacterial infections. Part I. Surgical infections. Current Medical Literature Ltd., London, 1995. P. 14-18.
3. Lohde E., Muller S., Luck M., et al. Analysis of risk factors for postoperative infectious complications. Proc. 18-th Int. Congress "Recent advances in chemotherapy", Stockholm, Sweden, 1993. P. 728-729.
4. Останин А.А., Леплина О.Ю., Шевела Е.Я., Hиконов С.Д., Черных Е.P. Изменения иммунологических показателей у онкологических больных при проведении адоптивной иммунотерапии. Иммунология. 1996. N. 1. С. 29-32.
5. Ostanin A.A., Chernykh H.R., Leplina O.Yu., Shevela C.Ya., Nikonov S.D., Kozlov V.A. IL-2-activated killer cells and native cytokines in the treatment of patients with advanced cancer. Russian J. Immunology. 1997. Vol. 2. N. 3-4. P. 167-176.
6. Cunningham-Rundles C., Siegal F.P., Cunningham-Rundles S., Lieberman P. Incidence of cancer in 98 patients with common varied immunodeficiency. J. Clin. Immunol. 1987. Vol. 7. N.1. P. 294-299.
7. Дмитриева Н.В. Применение клиндамицина при профилактике и лечении инфекционных осложнений в онкологической клинике. Антибиотики и химиотерапия. 1994. N. 2-3. С. 52-56.
8. Дмитриева Н.В., Петухова И.Н. Антибиотикопрофилактика послеоперационных инфекционных осложнений у онкологических больных. Клиническая антимикробная химиотерапия. 1999. Т. 1. N. 1. С.12-17.
9. Brivio F., Lissoni P., Marsali T., et al. Reversal of surgery induced immunosuppression by a preoperative therapy with IL-2 in cancer patients. Abstr. 717. In: ASCO proceedings. 1991.
10. Deehan D.J. Modulation of the cytokine and acute-phase response to major surgery by recombinant interleukin-2. Bt. J. Surg. 1995. Vol. 82. N. 1. P. 86-90.
11. Brivio F., Lissoni P., Tisi E., Erba L., Barni S., Tancini G. Effect of a preoperative therapy with interleukin-2 on surgey-induced lymphocytopenia in cancer patients. Oncology. 1992. Vol. 49. P. 65-69.
12. Romano F., Cesana G., Berselli M., et al. Biological, histological, and clinical impact of preoperative IL-2 administration in radically operable gastric cancer patients. J. Surg. Oncol. 2004. Vol. 88. P. 240-247.
13. Брискин Б.С., Бубнова Н.А., Громов М.И., Костюченко А.Л., Останин А.А., Петров С.В., Пивоварова Л.П., Ребенок Ж.А., Симбирцев А.С., Толстой А.Д., Черных Е.Р., Шевченко С.М. Ронколейкин в иммунотерапии сепсиса (круглый стол). Медицинская иммунология. 2000. Т. 2. N. 4. С. 447-457.
14. Останин А.А., Зайнутдинов Ю.Г., Стрельцова Е.И., Овечкин А.В., Агеев Н.Л., Леплина О.Ю., Тихонова М.А., Черных Е.Р. Хирургический сепсис. II. Эффективность иммунотерапии рекомбинантным интерлейкином-2. Вест. Хирургии. 2002. Т. 161. N. 4. С. 79-84.
15. Останин А.А., Черных Е.Р., Леплина О.Ю., Тихонова М.А., Овечкин А.В., Агеев Н.Л., Захарова Н.Ф., Стрельцова Е.И. Эффективность цитокинотерапии Ронколейкином в комплексном лечении хирургической инфекции. Пособие для врачей. Санкт-Петербург, 2002. 28 с.
16. Лебедев В.Ф., Козлов В.К., Гаврилин С.В., Степанов А.В., Добрынин В.М. Иммунотерапия рекомбинантным интерлейкином-2 тяжелых ранений и травм. СПб.: изд-во СПбГУ. 2001. 72 с.
17. Сухин К.А., Аксененко В.А. Способ профилактики послеоперационных осложнений у женщин с гнойно-воспалительными заболеваниями придатков матки. Патент RU 2211049 C2. 2001.
18. Останин А.А., Леплина О.Ю., Тихонова М.А., Шевела Е.Я., Курганова Е.В., Стрельцова Е.И., Черных Е.Р. Цитокин-опосредованные механизмы развития системной иммуносупрессии у больных с гнойно-хирургической патологией. Цитокины и воспаление. 2002. Т. 1. N. 1. С. 38-45.
19. Jonuleit H., Schmitt E., Schuler G., Knop J., Enk A.H. Induction of interleukin 10-producing, nonproliferating CD4+T cells with regulatory properties by repetitive stimulation with allogeneic immature human dendritic cells. J. Exp. Med. 2000 .Vol. 192. P. 1213 -1222.
ПРИЛОЖЕНИЯ
Приложение 1Ронколейкин® в иммунопрофилактике постхирургических инфекций
(Протокол клинического исследования)
1. Название исследования
Оценка эффективности Ронколейкина® в профилактике послеоперационных инфекционных осложнений, на примере радикально оперированных больных раком желудка и колоректальным раком. Фаза II клинических исследований.
2. Дизайн исследования
Двойное "слепое", рандомизированное, плацебо-контролируемое исследование.
3. Цель исследования
Оценить эффективность иммунопрофилактики в режиме двух внутривенных инфузий Ронколейкина® в дозе 0,5 млн МЕ в предупреждении послеоперационных инфекционных осложнений у радикально оперированных онкологических больных.
4. Препараты, дозы и путь введения
Курс иммунопрофилактики включает в себя 2 внутривенные инфузии Ронколейкина® в дозе 0,5 млн МЕ, или препарата-плацебо на вторые и пятые сутки послеоперационного периода. Перед введением содержимое ампулы растворяют в 1,5-2 мл раствора натрия хлорида для инъекций (согласно инструкции по использованию препарата). Полученный раствор переносят в 400 мл изотонического раствора натрия хлорида для инъеций. Для предотвращения потери биологической активности препарата Ронколейкин® к раствору в капельнице добавляют 10% раствор человеческого сывороточного альбумина в количестве 6 мл. При внутривенном введении инфузия всего объёма раствора осуществляется капельно в течение 4-6 часов.
5. Длительность исследования
24 месяца
6. Изучение эффективности
Основной параметр эффективности — отсутствие послеоперационных инфекционных осложнений на протяжении всего периода госпитализации. Дополнительные критерии эффективности — регрессия клинико-лабораторных проявлений эндотоксикоза, а также коррекция показателей иммунитета в течение 3 дней после окончания последней инфузии Ронколейкина® .
7. Оценка послеоперационных осложнений
После проведения иммунопрофилактики учитываются следующие инфекционные и гнойно-септические осложнения: 1) внутрибрюшной абсцесс; 2) внутрибрюшной инфильтрат; 3) Инфильтрат мягких тканей; 4) нагноение (некроз) раны или стенок полости раны; 5) флегмона брюшной стенки или малого таза; 6) парез кишечника длительностью более 3 суток; 7) кишечные свищи; 8) панкреонекроз; 9) перитонит; 10) сепсис, подтвержденный микробиологически или выявленный клинически по наличию, как минимум, двух из четырех признаков SIRS — температура тела (>380C или <360C); тахикардия (ЧСС>90 уд/мин); тахипное (ЧДД>20/мин); лейкоциты крови (>12 х 109/л или <4 х 109/л); 11) кратковременные эпизоды клинической манифестации SIRS.
8. Популяция больных
8.1. Основной диагноз
Рак желудка, включая гастроэзофагеальный рак; рак толстой кишки; рак прямой кишки на любой стадии опухолевого процесса (I-IV стадия, согласно международной TNM классификации, 1989 г.). Обязательным условием являлось выполнение радикальной хирургической операции, а также проведение антибиотикопрофилактики.
8.2. Количество больных
По 50-60 больных в основной клинической группе и в группе-плацебо.
8.3. Критерии включения
8.4. Критерии исключения
9. Выполнение исследования
9.1. Оценка до иммунопрофилактики
В день начала иммунопрофилактик, до проведения первой инфузии препарата проводится клинико-лабораторное обследование, которое включает общий анализ крови с подсчетом форменных элементов крови, СОЭ, гематокрит; биохимический анализ крови (общий белок, креатинин, натрий калий плазмы, мочевина плазмы, билирубин, сахар крови), оценку иммунного статуса.
9.2. Схема иммунопрофилактики
Больным будет проводиться один из двух вариантов ? двукратные в/в инфузии Ронколейкина® в дозе 0,5 млн МЕ (см. п.4) или препарата-плацебо.
По завершении иммунопрофилактики (в течение 3 суток после окончания второй инфузии препарата) выполняются контрольные исследования, включающие клиническое обследование, общий и биохимический анализ крови, оценку иммунного статуса. Возможное развитие послеоперационных, инфекционных осложнений (см. п.7) должно регистрироваться на протяжении всего периода госпитализации.
9.3. Сочетанная терапия
Подготовка больных к операции, а также их ведение в послеоперационном периоде (как в случае развития, так и при отсутствии инфекционных осложнений) должно осуществляться в соответствии с общепринятыми, традиционными методиками, включая использование антибактериальных препаратов с профилактической целью (зинацеф, 1,5 г в/в интраоперационно с введением наркоза, и затем по 1,5 г/сутки, в/в, в течение первых двух дней после операции). Не допускается использование цитокин-содержащих препаратов в ходе всего исследования (лейкинферон, интерфероны, ростовые факторы, и т.д.)
9.4. Прекращение иммунопрофилактики
Иммунопрофилактика прекращается в следующих случаях:
Приложение 2
Иммунологические исследования
Из венозной цельной или гепаринизированной крови выделяют стандартными
методами лейковзвесь, сыворотку, мононуклеарные клетки (МНК). МНК в концентрации
0,1х106/лунку культивируют в 96-луночных круглодонных планшетах
для иммунологических исследований в среде RPMI-1640 (Sigma), дополненной
0,3 мг/мл L-глютамина, 5 мМ HEPES-буфера, 100 мкг/мл гентамицина и 10%
инактивированной сыворотки доноров IY (АВ) группы крови при 370С
в СО2-инкубаторе. Для стимуляции клеток используют конканавалин
А (КонA, 15 мкг/мл, Sigma) и растворимые моноклональные анти-CD3 антитела
(анти-CD3-мАТ ICO-90, "Медбиоспектр" Москва) в концентрации
1 мкг/мл. Интенсивность пролиферации оценивают через 72 ч по включению
3Н-тимидина (1 µКю/лунку), добавленного за 18 ч до окончания
культивирования.
Методом проточной цитофлюориметрии (FACSCalibur, Becton Dickinson), используя
соответствующие моноклональные антитела ("Сорбент-сервис", Москва),
определяют содержание различных субпопуляций лимфоцитов (CD3+, CD4+ и
СD8+Т-лимфоцитов, CD20+В-лимфоцитов, CD16+NK-клеток), а также относительное
количество моноцитов, экспрессирующих HLA-DR антигены.
Методом проточной цитофлюориметрии среди свежевыделенных клеток лейковзвеси
определяют также процентное содержание апоптотических лимфоцитов, нейтрофилов
и моноцитов, которые вследствие фрагментации ДНК формируют характерный
гиподиплоидный пик при окрашивании пропидиум иодидом.
Для исследования баланса про- и противовоспалительных цитокинов используют
оценку биологической активности сыворотки крови [18]. Наличие в сыворотке
супрессорной активности определяют по степени снижения КонА-индуцированной
пролиферации МНК здоровых доноров (n=3) в присутствии 10% интактной сыворотки
больных (опыт) в сравнении с уровнем митогенного ответа в присутствии
10% интактной сыворотки доноров (контроль). Полученные результаты выражают
в виде индекса супрессорной активности (ИСА), рассчитанного по формуле:
ИСА = О÷К. Значения ИСА менее 0,80 расч.ед. свидетельствуют об
иммуносупрессорной активности сывороточных факторов.
Суммарную активность медиаторов, контролирующих воспалительную реакцию,
оценивают по способности исследуемых образцов сыворотки стимулировать
(воспалительная активность) или ингибировать (противовоспалительная активность)
продукцию перекиси водорода лейкоцитами здоровых доноров. Для этого клетки
лейковзвеси доноров инкубируют в течение 45 мин при 370С с сывороткой
больных (опыт) или здоровых доноров (контроль) в объемном соотношении
1:2 и определяют активность нейтрофилов по продукции Н2О2.
Полученные результаты выражают в виде индекса воспалительной активности
(ИВА), рассчитанного по формуле: ИВА = О÷К. Значения ИВА более
1,0 расч.ед. свидетельствуют о наличии воспалительной активности в тестируемых
образцах. ИВА менее 1,0 расч.ед. свидетельствует о противовоспалительной
активности сывороточных факторов.